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Introdução Transcriptômica via SuperSAGETranscriptômica via SuperSAGE Prof. Éderson Kido Depto Genética 08/2013 Objetivos • Apresentar o método SuperSAGE de transcriptômica • Destacar o potencial para identificar genes diferencialmente expressos, com potencial biotecnológico ou de saúde. SuperSAGE: uma visão Qualitativa e Quantitativa EcoP15 AAAAAAA-3‘ TTTTTTT-5‘cDNA AAAAAAA-3‘ TTTTTTT-5‘cDNA Tag Tag Tag Tag ----contagemcontagemcontagemcontagem TTTTTTT-5‘ AAAAAAA-3‘ TTTTTTT-5‘ cDNA AAAAAAA-3‘ TTTTTTT-5‘cDNA SuperTags . . . . . . AnotaçãoAnotaçãoAnotaçãoAnotação SAGE Serial Analysis of Gene Expression (Velculescu et al., 1995) 4 6 1 Concatenação de Formação de ditags Anotação limitada: • A tag (pequena = 14 pb) é observada em vários genes • O jeito seria gerar tags maiores Contagens de tags Poli(A)+ mRNA Extração de tags (14bp) Concatenação de ditags / clonagem BsmFI (15 pb para SAGE) GGGACNNNNNNNNNN^ CCCTGNNNNNNNNNNNNNN^- 5’ O tamanho da tag depende da Enzima CCCTGNNNNNNNNNNNNNN^- 5’ TCCRACNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN^ AGGYTGNNNNNNNNNNNNNNNNNN^-5’ CAGCAGNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN^ GTCGTCNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN^- 5’ EcoP15I (26 pb para SuperSAGE) MmeI (20 pb para LongSAGE) Vantagens da SuperSAGE (26 pb) (Matsumura et al., 2003) � Melhor identificação tag-gene � Melhor perfil de transcrição (até dois eucariotos� Melhor perfil de transcrição (até dois eucariotos em mesma amostra) � Permite usar astags como primers em PCRs � Usar as tags como sondas em chips de DNA; � Usar as tags em silenciamento gênico (RNAi) 18-20bp (MmeI, LongSAGE) Comparar 20 bp versus 26 bp Vantagem das 26 pb Diferenciar transcritos CATGGTGGCTCACAACCATC CATGGTGGCTCACAACCATC CATGGTGGCTCACAACCATC CATGGTGGCTCACAACCATC 26 bp (EcoP15I, SuperTAG) Immunoglobbulin kappa chain Tumor necrosis factor (ligand) superfamily, member 10 Homeodomain leucine zipper-encoding gene Mannose phosphate isomerase 1, transcript variant 4 CATAAC CGTAAT TGTAGA TGTATC BLAST hit, Mus musculus, Score= 52 Experimento ... • Experimento: Contrastantes: Tratamentos vs Controle • Extrair RNA total; • Purificar transcritos Poli A+ • Gerar bibliotecas; • Sequenciar tags; mRNA para cDNAs... AAAAAAAAAAAA mRNA cDNA 5‘ 3‘ Transcriptase Reversa SuperScript III cDNA dupla fita Amplificação cDNA 5‘3‘ 5‘ 3‘ 5‘3‘ DNA polimerase I *****GACGACTTTTT Eco P15 I Oligo dT-Primer *****GACGACTTTTT cDNAs Digestão com NlaIII Biotina 5‘ 3‘ 5‘3‘ *****GACGACTTTTT AAAACTGCTG***** TTTTGACGAC***** Captura magnética (Streptavidina e Beads) Ligação de Adaptador ao cDNA CAGCAGCATG GTCGTCGTAC AAACTGCTG**** TTTGACGAC**** BM Linker 1E Biotina Biotina CATG CATG SuperSAGE: enzima EcoP15I Dois sítios de reconhecimento inversamente orientados (head to head) 5’ 5’3’ 3’ 27 pb distante Sítio de corte CAGCAG CTGCTG GACGACGTCGTC N N N N 25 pb Geração da tag Digestão c/ Eco P15 I BM CAGCAGCATG GTCGTCGTAC AAACTGCTG**** TTTGACGAC****Linker 1E 27 pb Biotina sequenciamento / Extração da tag Purificação do Linker-Tag Ligação de um segundo adaptador CAGCAGCATG GTCGTCGTACLinker 1E Linker 2E** Análise estatística dastags • Software DiscoverySpace 4.0 – Arquivos com frequências das tags – Exclusão das tags singlets – Teste de p-value (Audic-Claverie; p < 0,05) – tags diferencialmente expressas (classificadas em induzidas ou reprimidas ) Bioinformática das tags • Anotação de tags (BlastN) contra bancos de ESTs (NCBI, outros) • ESTs não anotadas (mas com tags) são categorizadas• ESTs não anotadas (mas com tags) são categorizadas via ontologia gênica (termos hierárquicos) • Anotação + termos GO permitem buscas com palavras- chave • Dados de regulação (indução e repressão) geram perfis de expressão. Fluxograma de Análises Exemplo de alinhamento BLASTn de tag com EST Anotações e valores FC geram perfis de expressão p/ genes de interesse (Ex: Fatores de Transcrição) UR: unitags induzidas; FC: qtas vezes mais ou menos expressas comparando-se as bibliotecas Perfis de expressão para Quinases (prots relacionadas com sinalização de estímulos) Esquerda: controle; direita: tratamento; qto mais vermelho mais induzido Consideração Final • A técnica facilita identificar genes diferencialmente expressos em resposta a um tratamento e em relação a um controle, a partir detratamento e em relação a um controle, a partir de diferentes perfis de transcrição dos transcriptomas. • Alvos escolhidos são validados para estudos futuros (desenvolvimento de marcador molecular, transgenia, etc).